PCR檢測試劑盒操作全流程詳解：從樣本處理到結果分析的關鍵細節  

一、使用前準備：環境、試劑與個人防護  

環境要求  

選擇干凈、無塵、無風且已消毒的操作區域，避免交叉污染。  

實驗臺表面需用紫外燈照射30-60分鐘滅菌，照射距離保持60-90cm。  

試劑準備  

儲存條件：試劑盒需在-20℃以下避光保存，使用前恢復至室溫（避免反復凍融，建議分裝后單次使用）。  

試劑配制：使用高質量雙蒸水（0.22μm濾膜過濾或高壓滅菌），按說明書要求配制緩沖液、洗滌液等。  

標準品稀釋：  

標記離心管，用帶芯槍頭加入45μL稀釋液。  

逐級稀釋標準品，全程冰上操作。  

個人防護  

穿戴手套、口罩、實驗服，必要時佩戴護目鏡，防止試劑接觸皮膚或吸入。  

二、樣本處理：提取與純化核心步驟  

樣本采集與保存  

細胞、組織或培養基樣本需2-8℃保存，血液樣本需抗凝處理。  

避免使用金屬部分接觸樣本，防止核酸降解。  

核酸提取  

裂解：加入蛋白酶K和裂解液，渦旋振蕩后56℃孵育10分鐘。  

純化：  

加入無水乙醇沉淀核酸，轉移至吸附柱中離心棄液。  

用洗滌液（如DNA洗滌液）清洗吸附柱，13000rpm離心3分鐘以去除殘留雜質。  

加入洗脫液（如DNA洗脫液）室溫放置1分鐘后離心，收集核酸溶液。  

質量控制  

測定核酸濃度，確保A260/A280比值在1.8-2.0之間。  

避免使用渾濁或沉淀的樣本，必要時重新提取。  
 

三、PCR反應體系配置：精準操作避污染  

反應體系組成  

20μL體系示例：  

PCR反應液：16μL（含引物、dNTPs、緩沖液）  

TaqDNA聚合酶：2μL  

模板DNA：2μL（根據樣本濃度調整）  

礦物油（可選）：覆蓋反應液防止蒸發（有熱蓋的PCR儀無需使用）。  

加樣順序與技巧  

使用帶芯槍頭避免交叉污染，加樣后輕柔混勻并短暫離心。  

設置對照：  

陽性對照：使用已知濃度的標準品或陽性樣本。  

陰性對照：用雙蒸水或無模板緩沖液代替模板DNA。  

空白對照：不加入任何試劑，檢測環境污染。  

反應條件設定  

預變性：94-95℃3-5分鐘（解開DNA雙鏈）。  

循環擴增：  

變性：94-95℃30秒  

退火：50-60℃30秒（根據引物Tm值調整）  

延伸：72℃30-60秒（根據擴增片段長度調整，如1kb/分鐘）  

循環數：25-40次（通常35次足夠擴增至檢測限）。  

最終延伸：72℃5-10分鐘（確保所有片段延伸）。  

四、結果分析：熒光信號解讀與質量控制  

熒光信號檢測  

使用熒光定量PCR儀讀取Ct值（循環閾值），Ct值越小表示初始模板濃度越高。  

標準曲線繪制：以陽性對照濃度的對數值為橫軸，Ct值為縱軸，計算線性回歸方程（R²≥0.99為合格）。  

結果判定  

定量分析：根據標準曲線計算樣本中目標DNA的拷貝數。  

定性分析：  

陰性對照無Ct值或Ct≥40，陽性對照Ct≤35且擴增曲線呈典型S形。  

樣本Ct≤40且擴增曲線正常判定為陽性；無Ct或Ct≥40判定為陰性。  

異常處理  

翹尾現象：復查樣本或重新提取核酸，排除實驗室污染（如環境樣本或陰性對照檢測）。  

弱陽性擴增：檢查試劑有效期、反應條件或重新采樣驗證。